Preview

Национальный журнал глаукома

Расширенный поиск

Количественная характеристика клеток Лангерганса в слое нервных волокон роговицы при первичной открытоугольной глаукоме

https://doi.org/10.25700/NJG.2019.02.06

Полный текст:

Аннотация

Цель. Оценить количество клеток Лангерганса (КЛ) в роговице при первичной открытоугольной глаукоме (ПОУГ) в различных стадиях заболевания.

Методы. В исследование вошли 129 пациентов. Основная группа — 102 пациента (204 глаза) в возрасте от 42 до 83 лет (62,5±2,4 года) — с диагнозом ПОУГ I-IV стадий. Контрольная группа — 27 пациентов (54 глаза) — офтальмологически здоровые добровольцы в возрасте от 54 до 76 лет (65,9±1,4 года) с нормальным уровнем внутриглазного давления (ВГД) и без признаков ПОУГ. Были проведены: визометрия, биомикроскопия переднего отрезка глаза, офтальмоскопия, гониоскопия, контурная тонометрия по методу Pascal, оптическая когерентная томография (ОКТ) дисков зрительных нервов (Zeiss Stratus 3000) и конфокальная микроскопия роговицы (КМР) (HRT III, с Rostock Cornea Modul).

Результаты. При ПОУГ среднее количество КЛ оказалось выше, чем в группе нормы, и составило 144±21 кл./мм2, что достоверно отличается от группы нормы (р=0,0002). Обнаружено возрастание количества КЛ по мере развития заболевания, увеличение количества КЛ от начальной глаукомы к терминальной. Выявлены достоверная положительная связь количества КЛ в слое суббазальных нервных волокон (НВР) со стадией заболевания (R=0,23, p<0,05), достоверная отрицательная корреляционная связь с коэффициентом анизотропии направленности НВР в группе ПОУГ (R=-0,29, р<0,001). Исследована межокулярная асимметрия посредством вычисления показателя межокулярной асимметрии (ПМА). ПМА количества КЛ в слое НВР тем выше, чем больше рас- хождение по стадиям ПОУГ между парными глазами. При значении ПМА КЛ 19,68% чувствительность и специфичность предлагаемого показателя для диагностики ПОУГ составили 94,1 и 66,6% соответственно. Таким образом, значения ПМА КЛ выше 19,68% принимаются как патологические.

Заключение. Обнаруженное увеличение количества КЛ в слое НВР указывает на присутствие воспалительного процесса в глазу, который вполне может быть аутоиммунным. И может претендовать на первопричинность открытоугольной глаукомы, приводить к патологической глаукомной склеропатии с повреждением дренажного аппарата глаза и соответствующим повышением ВГД, а также диктовать характерное клиническое течение в виде хронического двухстороннего вялотекущего процесса. В этом смысле нейродегенеративные процессы в переднем и заднем сегментах глаза патогенетически едины.

Об авторах

А. А. Попова
ООО «Офтакит»
Россия

Попова Анастасия Александровна - врач-офтальмолог.

150040, Российская Федерация, Ярославль, ул. Свободы, д. 42



В. В. Страхов
ГБОУ ВПО Ярославский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

Д.м.н., профессор, заведующий кафедрой глазных болезней.

150000, Российская Федерация, Ярославль, ул. Революционная, д. 5



А. А. Мурашов
Ярославское высшее военное училище противовоздушной обороны
Россия

Д.т.н.

150001, Российская Федерация, Ярославль, Московский просп., д. 28



Н. Ю. Ширина
ГБОУ ВПО Ярославский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

К.т.н.

150000, Российская Федерация, Ярославль, ул. Революционная, д. 5



З. В. Сурнина
НИИ ГБ РАМН
Россия

К.м.н., врач-офтальмолог.

119021, Российская Федерация, Москва, ул. Россолимо, 11 А, Б



А. И. Малахова
ОГБУЗ «Смоленская областная клиническая больница»
Россия

К.м.н., врач-офтальмолог.

214000, Российская Федерация, Смоленск, пр. Гагарина, д. 27



О. Н. Климова
ГБОУ ВПО Ярославский государственный медицинский университет Минздрава России
Россия

К.м.н., врач-офтальмолог.

150000, Российская Федерация, Ярославль, ул. Революционная, д. 5



Список литературы

1. Волков В.В. Глаукома открытоугольная. Москва: МИА; 2008; 348 с.

2. Quigley H.A., Broman A.T. The number of people with glaucoma worldwide in 2010 and 2020. Br J Ophthalmol. 2006; 90(3):262-267.

3. Нероев В.В. Работа Российского национального комитета по ликвидации устранимой слепоты в рамках программы ВОЗ «Зрение 2020». Доклад на Российском общенациональном офтальмологическом форуме. Москва, 2014. [Электронный ресурс] URL: http://www.helmholtzeyeinstitute.ru/ (дата обращения 27.07.2017)

4. Нероев В.В., Киселева О.А., Бессмертный А.М. Результаты мультицентровых исследований эпидемиологических особенностей первичной открытоугольной глаукомы в Российской Федерации. Российский офтальмологический журнал. 2013; 3:4-7.

5. Leske M.C., Wu S.Y., Hennis A. et al. Risk factors for incident openangle glaucoma: the Barbados Eye Studies. Ophthalmology. 2008; 115:85-93.

6. Еричев В.П., Петров С.Ю., Козлова И.В., Макарова А.С., Рещикова В.С. Современные методы функциональной диагностики и мониторинга глаукомы. Часть 1. Периметрия как метод функциональных исследований. Национальный журнал глаукома. 2015; 14(2):75-81.

7. Еричев В.П., Петров С.Ю., Макарова А.С., Козлова И.В., Рещикова В.С. Современные методы функциональной диагностики и мониторинга глаукомы. Часть 2. Диагностика структурных повреждений сетчатки и зрительного нерва. Национальный журнал глаукома. 2015; 14(3):72-79.

8. Еричев В.П., Петров С.Ю., Козлова И.В., Макарова А.С., Рещикова В.С. Современные методы функциональной диагностики и мониторинга глаукомы. Часть 3. Роль морфофункциональных взаимоотношений в раннем выявлении и мониторинге глаукомы. Национальный журнал глаукома. 2016; 15(2):96-101.

9. Страхов В.В., Алексеев В.В. Патогенез первичной глаукомы — «все или ничего». Глаукома. 2009; 2:40-52.

10. Страхов В.В., Сурнина З.В., Малахова А.И., Климова О.Н., Попова А.А. Дегенеративные изменения в слое нервных волокон роговицы у пациентов с первичной открытоугольной глаукомой. Национальный журнал глаукома. 2017; 16(4):52-68.

11. Алексеев И.Б., Страхов В.В., Мельникова Н.В., Попова А.А. Изменения фиброзной оболочки глаза у пациентов с впервые выявленной первичной открытоугольной глаукомой. Национальный журнал глаукома. 2016; 15(1):13-24.

12. Zhivov A., Stave J., Vollmar B., Guthoff R. In vivo confocal microscopic evaluation of Langerhans cell density and distribution in the normal human corneal epithelium. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2005; 243:1056-1061.

13. Guthoff R.F., Baudouin C., Stave J. Atlas of confocal laser scanning invivo microscopy in opthalmology. Principles and applications in diagnostic and therapeutic ophtalmology. SpringerVerlag Berlin Heidelberg; 2006. 34 p.

14. Петров С.Ю., Фокина Н.Д., Шерстнева Л.В., Вострухин С.В., Сафонова Д.М. Этиология первичной глаукомы: современные теории и исследования. Офтальмологические ведомости. 2015; 8(2):47-56.

15. Рукина Д.А., Догадова Л.П., Маркелова Е.В., Абдуллин Е.А., Осыховский А.Л., Хохлова А.С. Иммунологические аспекты патогенеза первичной открытоугольной глаукомы. Клиническая офтальмология. 2011; 12(4):162-165.

16. Аветисов С.Э., Сурнина З.В., Новиков И.А., Махотин С.С. Новые подходы к оценке состояния нервных волокон роговицы. В кн.: VIII Российский общенациональный офтальмологический форум. Сб. науч. тр. 2015: 48-50.

17. Аветисов С.Э., Новиков И.А., Махотин С.С., Сурнина З.В. Вычисление коэффициентов анизотропии и симметричности направленности нервов роговицы на основе автоматизированного распознавания цифровых конфокальных изображений. Медицинская техника. 2015; 3:23–25.

18. Страхов В.В., Алексеев В.В., Попова А.А., Аль-Мррани А.М. Межокулярная асимметрия толщины радужки и склеры по данным ультразвуковой биомикроскопии в норме и при первичной открытоугольной глаукоме. РМЖ. Клиническая офтальмология. 2012; 13(4):118-120.

19. Страхов В.В., Ермакова А.В., Корчагин Н.В., Казанова С.Ю. Асимметрия тонометрических, гемодинамических и биоретинометрических показателей парных глаз в норме и при первичной глаукоме. Глаукома. 2008; 4:11–16.

20. Деев Л.А., Молчанов В.В., Малахова А.И., Андреева О.В. Классификация патоморфологических изменений роговицы на фоне терминальной стадии первичной глаукомы. Глаукома. 2010; 4:3-9.

21. Малахова А.И., Деев Л.А., Молчанов В.В. Изменения роговицы у больных с первичной открытоугольной глаукомой. Национальный журнал глаукома. 2015; 14(1):84-93.

22. Юнкеров В.И., Григорьев С.Е. Математико-статистическая обработка данных медицинских исследований. СПб.: ВМедА; 2002. 266 с.

23. Peat J., Barton B. Medical statistics: a guide to data analysis and critical appraisal NY: Blackwell Publishing, 1st ed. 2005. 324 p.

24. Егорова Г.Б., Федоров А.А., Аверич В.В. Морфологические изменения при глаукоме на фоне повышенного ВГД и при длительной гипотензивной терапии по результатам конфокальной микроскопии роговицы. РМЖ. Клиническая офтальмология. 2016; 3:113-117.

25. Ranno S., Fogagnolo P., Rossetti L., Orzalesi N., Nucci P. Changes in corneal parameters at confocal microscopy in treated glaucoma patients. Clin ophthalmol. 2011; 5:1037-1042.

26. Masters B.R. Confocal microscopy: history, principles, instruments, and some applications to the living eye. Comments Mol Cell Biophys. 1995; 8(5):243-271.

27. Muller L.J., Vrensen G.F., Pels L., Cardozo B.N., Willekens B. Architecture of human corneal nerves. Invest Ophtalmol Vis Sci. 1997; 38:985-994.

28. Muller L.J., Marfurt C.F., Kruse F., Tervo T.M. Corneal nerves: structure, contents and function. Exper Eye Res. 2003; 76:521-542.

29. Tavakoli M., Hossain P., Malik R.A. Clinical application of corneal confocal microscopy. Clin Ophtalmol. 2008; 2(2):435-445.

30. Scarpa F., Grisan E., Ruggeri A. Automatic recognition of corneal nerve structures in images from confocal microscopy. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2008; 49:4801-4807.

31. Prydal J.I., Kerr Muir M.G., Dilly P.N., Corbett M.C., Verma S., Marshall J. Confocal microscopy using oblique sections for measurement of corneal epithelial thickness in conscious humans. Acta Ophthalmol Scand. 1997; 75:624–628.

32. Petroll W.M., Jester J.V., Cavanagh H.D. In vivo confocal imaging. Int Rev Exp Pathol. 1996; 36:93–129.

33. Kоhler B., Allgeier S., Eberle F. et al. Image reconstruction of the corneal subbasal nerve plexus with extended field of view from focus image stacks of a confocal laser scanning microscope. Klin Monatsbl Augenheilkd. 2011; 228:1060–1066.

34. Oliveira-Soto L., Efron N. Morphology of corneal nerves using confocal microscopy. Cornea. 2001; 20:374–384.

35. Masters B.R., Thaer A.A. In vivo human corneal confocal microscopy of identical fields of subepithelial nerve plexus, basal epithelial, and wing cells at different times. Microsc Res Tech. 1994; 29:350–356.

36. Аветисов С.Э., Егорова Г.Б., Федоров А.А. и др. Конфокальная микроскопия роговицы. Сообщение 1. Особенности нормальной морфологической картины. Вестник офтальмологии. 2008; 3:3–5.

37. Ткаченко Н.В., Астахов Ю.С. Диагностические возможности конфокальной микроскопии при исследовании поверхностных структур глазного яблока. Офтальмологические ведомости. 2009; 2(1):82–89.

38. Штейн Г.И. Руководство по конфокальной микроскопии. СПб.: ИНЦ РАН; 2007: 6-10.

39. Marfurt C.F., Cox J., Deek S., Dvorscak L. Anatomy of the human corneal innervations. Exper Eye Res. 2009; 90:478-492.

40. Jalbert I., Stapleton F., Papas E., Sweeney D.F., Coroneo M. In vivo confocal microscopy of the human cornea. Br J Ophthalmol. 2003; 87(2):225-236.

41. Efron N., Perez-Gomez I., Mutalib H.A. Confocal microscopy of the human cornea. Cont Lens Anterior Eye. 2001: 24:16-24.

42. Burgoyne C.F., Downs J.C., Bellezza A.J. at al. The optic nerve head as biomechanical structure: a new paradigm for understanding the role of IOP-related stress and strain in the pathophysiology of glaucomatous optic nerve head damage. Progr Retin Eye Res. 2005; 24:19-73.

43. Burgoyne C.F., Morrison J.C. The anatomy and pathophysiology of the optic nerve head in glaucoma. J Glaucoma. 2001; 10(5):16-18.

44. Quigley H., Anderson D. Distribution of axonal transport blockade by acute intraocular pressure elevation in the primate optic nerve head. Invest Ophthalmol Vis Sci. 1977; 16(7):640-644.

45. Quigley H., Addicks E.M., Green W.R. Optic nerve damage in human glaucoma. Arch Ophthalmol. 1982; 100:135-146.

46. Куроедов А.В., Городничий В.В. Компьютерная ретинотомография (HRT): диагностика, динамика, достоверность. Москва: Сто- личный бизнес; 2007. 231 c.

47. Хаитов Р.М., Пинегин Б.В., Ярилин А.А. Руководство по клинической иммунологии. М.: ГЕОТАР-Медиа; 2009: 308-311.

48. Ляшенко А.А. Цитокины и молекулярные основы заболеваний старческого возраста. Клиническая геронтология. 2003; 3:45-54.

49. Слепова О.С., Арапиев М.У., Ловпаче Дж.Н. и др. Особенности местного и системного цитокинового статуса у здоровых разного возраста и пациентов с начальной стадией первичной открыто-угольной глаукомы. Национальный журнал глаукома. 2016; 15(1): 3-12.

50. Новиков Д.К., Генералов И.И., Данющенкова Н.М. Медицинская микробиология. Витебск; 2010. 597 с.


Для цитирования:


Попова А.А., Страхов В.В., Мурашов А.А., Ширина Н.Ю., Сурнина З.В., Малахова А.И., Климова О.Н. Количественная характеристика клеток Лангерганса в слое нервных волокон роговицы при первичной открытоугольной глаукоме. Национальный журнал глаукома. 2019;18(2):47-59. https://doi.org/10.25700/NJG.2019.02.06

For citation:


Popova A.A., Strakhov V.V., Murashov A.A., Shirina N.Y., Surnina Z.V., Malakhova A.I., Klimova O.N. Research of Langerhans cells in the subepithelial corneal nerve fiber layer in primary open-angle glaucoma. National Journal glaucoma. 2019;18(2):47-59. (In Russ.) https://doi.org/10.25700/NJG.2019.02.06

Просмотров: 8


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2078-4104 (Print)
ISSN 2311-6862 (Online)